改良UMI-ATAC-seq技術在提高開放染色質檢測靈敏度的應用
瀏覽次數(shù):2094 發(fā)布日期:2021-5-19
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Nature Commus: PippinHT助力UMI-ATAC-seq 技術,提高開放染色質的檢測靈敏度
ATAC-seq測序技術簡介
通過轉座酶獲取開放染色質信息的測序技術,英文全稱為Assay for Transposase Accessible Chromatin using sequencing。ATAC-seq測序技術的常規(guī)流程大致是,細胞或組織樣本在核質分離后,將細胞核單獨收集在一起,然后通過轉座酶對核內的染色質進行打斷(轉座酶可以將自身結合的一段序列隨機插入到基因組中)。緊密包裹的染色質DNA不會被轉座酶打斷,而開放區(qū)域的染色質DNA會被轉座酶隨機插入并打斷。將這些打斷后的DNA收集在一起進行后續(xù)的建庫、測序和分析,即可得到開放染色質的信息(見Fig.1)。開放性染色質是指某個時間點同時進行轉錄的DNA區(qū)域,也被稱為可及性染色質。
Fig.1 ATAC-seq技術示意圖
傳統(tǒng)ATAC-Seq測序技術的不足之處在于,由于存在PCR擴增步驟,使用標準的ATAC-seq流程無法從PCR擴增產生的PCR duplicates(NGS中由于PCR bias而產生的重復reads被稱作duplicates,它是正常測序過程中伴隨的一種冗余的誤測序產物,由于這些重復序列并不能帶來額外信息,相反會影響變異檢測結果的準確性,因此下游生信分析中需要去除這些重復序列)中準確地識別出獨立產生的相同Tn5插入。
改良的UMI-ATAC-seq測序技術
2020年11月份發(fā)表在Nature子刊《Communications Biology》上的一篇文章中,來自中國華中農業(yè)大學的科研工作者提出對標準的ATAC-seq技術進行改良,將帶有標準TruSeq測序接頭的獨特分子標簽(Unique Molecular Identifiers ,簡稱UMI)添加至標準的ATAC-seq流程中,即UMI-ATAC-seq測序技術(見Fig.2)。 具有相同UMI標簽的完全相同的DNA片段是由同一來源模板經過PCR擴增產生的,而帶有不同UMI標簽的完全相同的DNA片段則可能來自不同的細胞或基因組。因此該技術通過引入獨特的分子標簽UMIs,能夠從PCR duplicates中準確地識別出獨立產生(不同細胞/基因組來源的)的但是序列一致的 Tn5插入reads。他們隨后證明了UMI-ATAC-seq技術能夠更加準確地量化染色質的可及性/開放性,并提高了轉錄本的識別靈敏度。該文章指出,UMI-ATAC-seq對比標準的ATAC-seq技術,可以保留并識別出約20%被誤判為PCR duplicates的有用 reads,避免了有效信息的丟失。其中,文庫制備過程中的PCR擴增產物,通過PippinHT實現(xiàn)180-600bp的片段選擇,繼而使用TruSeq測序引物,在illumina測序平臺進行測序分析。
Fig2:The workflow of UMI-ATAC-seq
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原文鏈接:
https://www.nature.com/articles/s42003-020-01403-4
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