Annexin V/PI 雙染法流式檢測(cè)細(xì)胞凋亡是最常用的檢測(cè)細(xì)胞凋亡的方法之一。在細(xì)胞開(kāi)始早期凋亡時(shí), PS 會(huì)外翻到細(xì)胞表面,即細(xì)胞膜外側(cè)。用綠色熒光探針 YF488 標(biāo)記的 Annexin V,可以結(jié)合外翻的磷酯酰絲氨酸,從而檢測(cè)細(xì)胞凋亡的重要特征。 碘化丙啶( Propidium Iodide, PI)是一種 DNA 結(jié)合染料,它可以染色壞死細(xì)胞或凋亡晚期喪失細(xì)胞膜完整性的細(xì)胞的細(xì)胞核。 PI 可以由 488,532 或 546 nm 的激光激發(fā),呈現(xiàn)紅色熒光。
因此將 YF 488-Annexin V 與 PI 匹配使用,就可區(qū)分活細(xì)胞、早晚期凋亡細(xì)胞和死細(xì)胞。
YF488 染料與傳統(tǒng) FITC 相比,熒光亮度更高,且不受環(huán)境中 pH 的影響,具有良好的光穩(wěn)定性。
一、操作步驟(貼壁細(xì)胞為例)
1.1 對(duì)照管的設(shè)置
(1)空白管:誘導(dǎo)凋亡的細(xì)胞不加染料,用來(lái)調(diào)節(jié)電壓;
(2)單染管:分別需要只加 PI 和熒光標(biāo)記的 Annexin V 兩個(gè)單染管,用來(lái)調(diào)節(jié)補(bǔ)償;
(3)實(shí)驗(yàn)管:誘導(dǎo)凋亡的細(xì)胞加本次實(shí)驗(yàn)的所有熒光染料;
(4)陰性管:正常培養(yǎng)細(xì)胞加入染料,確認(rèn)細(xì)胞正常狀態(tài),排除假陽(yáng)性
1.2 細(xì)胞處理及染色
(1)取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞接種于 6 孔板或 6cm 培養(yǎng)皿(用什么培養(yǎng)皿取決于所培養(yǎng)的細(xì)胞,保證最終收集的細(xì)胞數(shù)大于 5×105 個(gè));
(2)根據(jù)實(shí)驗(yàn)需要處理細(xì)胞。收集細(xì)胞時(shí)將培養(yǎng)液吸至離心管內(nèi),PBS 洗滌細(xì)胞一次,用不含 EDTA 的胰酶消化細(xì)胞,并收集于離心管中(懸浮細(xì)胞可直接離心收集);
注:用胰蛋白酶消化然后使細(xì)胞在最佳細(xì)胞培養(yǎng)條件和培養(yǎng)基中恢復(fù)約 30 分鐘,然后再染色。 胰蛋白酶消化會(huì)暫時(shí)破壞質(zhì)膜,允許Annexin V結(jié)合磷脂酰絲氨酸在細(xì)胞膜的細(xì)胞質(zhì)表面上,從而導(dǎo)致假陽(yáng)性染色。
(3)將收集的培養(yǎng)基和細(xì)胞混勻,4℃ 300g 離心 5min,棄上清。用預(yù)冷的 PBS 洗滌細(xì)胞 2 次,每次 4℃ 300g 離心 5min;
(4)加入 1× Binding Buffer,將細(xì)胞調(diào)節(jié)成相同濃度(一般為 1×106/mL);
(5)取 1-2×105 個(gè)細(xì)胞懸液于流式管中,加入適量標(biāo)記了熒光染料的 Annexin V 和適量 PI,輕輕混勻;
(6)室溫避光孵育 15-20 min;
(7)加入 300 μl PBS 重懸細(xì)胞,盡快(1 小時(shí)內(nèi))用流式細(xì)胞儀檢測(cè)。
PS:對(duì)照管設(shè)置尤其重要
二、實(shí)驗(yàn)結(jié)果圖
2.1 YF488-Annexin V 熒光顯微鏡實(shí)驗(yàn)效果
2.2 YF488 -Annexin V 流式實(shí)驗(yàn)效果圖
YF 488-Annexin V 與 PI 雙染試劑盒能夠完美的區(qū)分活細(xì)胞,早期凋亡細(xì)胞及晚期凋亡細(xì)胞/壞死細(xì)胞。
三、常見(jiàn)問(wèn)題
3.1 各象限代表的細(xì)胞狀態(tài)問(wèn)題
Q1:(AnnexinV-染料)-/PI+,此區(qū)域的細(xì)胞為壞死細(xì)胞。也可能有少數(shù)的晚期凋亡細(xì)胞在其中,甚至機(jī)械損傷的細(xì)胞也包含其中。Annexin V-/PI+越多,實(shí)驗(yàn)結(jié)果越不可信,建議實(shí)驗(yàn)中盡量控制這一象限細(xì)胞比例。
Q2: (AnnexinV+染料)+/PI+,此區(qū)域的細(xì)胞為晚期凋亡細(xì)胞。
Q3:(AnnexinV-染料)+/PI-,此區(qū)域的細(xì)胞為早期凋亡細(xì)胞。
Q4:(AnnexinV-染料)-/PI-,此區(qū)域的細(xì)胞為活細(xì)胞。
3.2 補(bǔ)償調(diào)節(jié)問(wèn)題
(1)不同的染料組合,補(bǔ)償大小不同。
(2)電壓對(duì)補(bǔ)償?shù)挠绊懖恍,電壓變補(bǔ)償變,所以我們要先調(diào)節(jié)FSC、SSC和熒光通道的電壓,電壓調(diào)好之后再調(diào)補(bǔ)償。
(3)細(xì)胞也是影響補(bǔ)償大小的一個(gè)因素,如淋巴細(xì)胞和腫瘤細(xì)胞之間、活細(xì)胞與固定后細(xì)胞之間,標(biāo)記相同的熒光素偶聯(lián)抗體,使用相同的通道時(shí),各通道之間的補(bǔ)償可能不同。所以當(dāng)細(xì)胞理化性質(zhì)差異較大時(shí),最好重新調(diào)節(jié)新的樣品細(xì)胞的補(bǔ)償,確保獲得準(zhǔn)確的流式結(jié)果。
3.3 關(guān)于假陽(yáng)性問(wèn)題
(1)對(duì)貼壁細(xì)胞而言,消化是最關(guān)鍵的步驟,消化液需用不含 EDTA 的胰酶,因?yàn)?Annexin V 和 PS 的結(jié)合需要 Ca2+,而 EDTA 是 Ca2+ 螯合劑,使用含有 EDTA 的胰酶會(huì)造成假陰性。其次消化時(shí)間不宜過(guò)長(zhǎng),吹打細(xì)胞要輕柔,因?yàn)橐让傅倪^(guò)度消化和機(jī)械損傷都會(huì)引起細(xì)胞膜的損傷,造成假陽(yáng)性。細(xì)胞消化下來(lái)后,建議在培養(yǎng)箱中在孵育 30min,使細(xì)胞膜恢復(fù)完整性,避免假陽(yáng)性,或者將細(xì)胞報(bào)訊在含 2% BSA 的 PBS 中,防止進(jìn)一步的損傷。
(2)神經(jīng)細(xì)胞膜容易破壞外翻,導(dǎo)致假陽(yáng)性,所以Annexin V/PI 雙染法流式檢測(cè)細(xì)胞凋亡不適用于神經(jīng)細(xì)胞。
3.4 關(guān)于熒光染料選擇的問(wèn)題
(1) 對(duì)于熒光染料的選擇,建議如果流式細(xì)胞儀帶有 488 nm 和 633 nm 兩個(gè)或以上激光管,首先考慮用 APC 或 YF647 標(biāo)記 Annexin V,因?yàn)樗?PI 通道幾乎不用考慮光重疊問(wèn)題,可以減少調(diào)節(jié)補(bǔ)償?shù)臒⿶溃绻挥?488 nm 激光管則可選擇YF488/FITC 標(biāo)記的 Annexin V。
(2)再次需要考慮細(xì)胞是否自帶熒光,因?yàn)楦腥静《净蛸|(zhì)粒轉(zhuǎn)染的細(xì)胞往往帶 GFP 熒光,GFP 與 YF488/FITC 通道重疊,不能選擇 YF488/FITC 標(biāo)記的 Annexin V,此時(shí)如果只有 488 nm 一根激光管可以用 PE 標(biāo)記 Annexin V,用 7-AAD 代替 PI,或者改用 YF647 Annexin V 代替 YF488。
(3)最后還要考慮處理因素是否帶有熒光,本實(shí)驗(yàn)室就碰到過(guò)一個(gè)促凋亡藥物 Doxorubicin 本身發(fā)紅色熒光,對(duì) PI 通道的檢測(cè)造成嚴(yán)重干擾,而且濃度越大干擾越明顯。這時(shí)建議選用其他檢測(cè)方法。
3.5 設(shè)門(mén)問(wèn)題
(1)要特別注意在FSC/SSC圈門(mén)時(shí),所選細(xì)胞范圍會(huì)對(duì)結(jié)果造成較大影響,所以在分析數(shù)據(jù)時(shí),要把所有細(xì)胞都圈進(jìn)FSC/SSC的門(mén)內(nèi),這樣實(shí)驗(yàn)結(jié)果才會(huì)更可信。如圖,使細(xì)胞群大概位于對(duì)角線上,并且細(xì)胞群較集中,群內(nèi)細(xì)胞比例要在80%以上,如果細(xì)胞全部圈入,細(xì)胞比例才50%或者更低,說(shuō)明細(xì)胞被壓在了坐標(biāo)軸上,這時(shí)要重新調(diào)節(jié)FSC和SSC。
(2)貼壁細(xì)胞做Annexin V凋亡檢測(cè),通常分群不太規(guī)則,這時(shí)我們可以根據(jù)不加藥細(xì)胞來(lái)畫(huà)不規(guī)則的十字門(mén)。如下面圖形的設(shè)門(mén)方式。
3.6 免疫染色與凋亡染色順序問(wèn)題
Annexin V凋亡染色可以和抗體一起對(duì)細(xì)胞進(jìn)行染色嗎?
可以,但建議Annexin V和其它抗體分開(kāi)染色。 例如Annexin V、PI和CD3、CD8同時(shí)標(biāo)記淋巴細(xì)胞,可以先在PBS中標(biāo)記CD3/CD8后洗去,再在Binding buffer(含鈣離子)中標(biāo)記Annexin V。
3.7 其他問(wèn)題
(1)液氮保存的組織塊,不建議再做流式細(xì)胞分析。因?yàn)榱魇郊?xì)胞分析要求細(xì)胞分散、單個(gè),活性好,組織在凍存、復(fù)溫的過(guò)程中會(huì)有大量的細(xì)胞死亡,同時(shí)經(jīng)過(guò)這一過(guò)程的組織在分離成單個(gè)細(xì)胞的時(shí)候會(huì)形成許多細(xì)胞碎片,不宜上流式檢測(cè),所以用于流式檢測(cè)的標(biāo)本最好是新鮮標(biāo)本,即取材后立即檢測(cè),效果最好。 液氮保存的組織塊,可以將組織標(biāo)本進(jìn)行切片,然后做原位染色,觀察組織細(xì)胞的凋亡。
(2) Annexin V也可以用在植物和細(xì)菌中檢測(cè)凋亡,具體實(shí)驗(yàn)步驟可參考相關(guān)文獻(xiàn)。
(3) 如果樣品來(lái)源于血液,必須去除血液中的血小板,因?yàn)檠“搴蠵S,能與Annexin V結(jié)合,干擾實(shí)驗(yàn)結(jié)果。
(4)操作中務(wù)必動(dòng)作輕柔,離心后確認(rèn)管底是否有細(xì)胞,經(jīng)常有人液體一甩,細(xì)胞也給甩走了。操作中還要注意避光。