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蛋白純化實驗設計和抗體選擇

瀏覽次數(shù):1772 發(fā)布日期:2021-12-6  來源:MedChemExpress

小 M 不怕純化“難”,IP、WB 只等閑。泡了兩年實驗室的小 M,理論與實操經驗共有,且看我如何闖過蛋白純化的幾道“關”。

 
第一關 產品選擇
 

小 M 敲黑板:此關最基礎也最重要,謹防“一步錯,步步錯”。

 

親和層析作為經典、高效的純化方法,利用目的分子與填料配基之間特異且可逆的相互作用,可以從細胞裂解液或其他生物樣品中,一步純化得到較高純度目的分子。選擇一款合適的親和純化瓊脂糖,可以高效、便捷、可靠地從生物樣品中分離蛋白、抗體。如何選擇才叫“合適”?且聽我慢慢道來:

 

抗體基礎知識篇,“知己知彼百戰(zhàn)百勝”

抗體 (Antibody),又名免疫球蛋白 (Immunoglobulin,Ig),是一種由 B 細胞產生的大型 Y 形糖蛋白?贵w以一個或多個 Y 形單體存在,每個 Y 形單體由 4 條多肽鏈組成:兩條相同的重鏈 (Heavy Chain) 和兩條相同的輕鏈 (Light Chain) (圖 1)。

 

抗體重鏈 Fc 區(qū)域的特異性序列決定了 Ig 的類型,如 α-IgA、δ-IgD、ε-IgE、γ-IgG、μ-IgM。輕鏈則有兩種類型,分別為 λ 型和 κ 型。

 

圖 1. 抗體結構

 

抗體——配體要相配!

心心念念純化人源 IgG3,一通操作后,目的條帶位置空空如也。最后發(fā)現(xiàn),當初選擇了 Protein A 當親和配體。人源 IgG3 和 Protein A,不相配!λ 輕鏈和 Protein L,不相配!蛋白純化也講究門當戶對。
 
抗體的親和純化配體包括 Protein A、Protein G、Protein L 等。對于多數(shù)哺乳動物,Protein G 比 Protein A 對 IgG 有更高的親和力,如人 IgG3、小鼠 IgG1 和大鼠 IgG2a,但 Protein G 不能和人的 IgM、IgD、IgA 等結合。
 
與 Protein A、Protein G 相比,Protein L 具有更廣譜的 Ig 結合能力,幾乎可結合所有含有 kappa 輕鏈的 Ig (IgG、IgM、IgA、IgE 和 IgD) 及單鏈可變片段 (scFv) 和 Fab 片段。記根據(jù)抗體類型,選擇合適的親和純化配體 (圖 2)。

 

圖 2. 人源抗體與 Protein A、Protein G、Protein L 結合能力對照表

 

第二關 使用方法選擇
 
 
MCE Protein AProtein G、Protein L 瓊脂糖,可從血清、細胞培養(yǎng)上清液或腹水中一步分離抗體;Anti-Flag 親和凝膠 可通過 IP 等方法捕獲目的蛋白;鏈霉親和素瓊脂糖 則可和生物素化樣本高效結合。
 
抗體純化“大”實驗,IP、Pull Down“小”操作,重力柱“大”而離心管“小”焉。殺雞焉能用宰牛刀,產品詳細使用方法奉上 (如下方案僅供參考,詳見各產品使用說明)。
 
■ 重力過柱法,適合從血清等生物樣本中分離、純化抗體。一次實驗獲得大量抗體,妙!
1)裝填:根據(jù)樣品量取適量的瓊脂糖填料加入親和層析柱,讓儲存液靠重力流出;
2)平衡:隨后用平衡 Buffer 對柱子進行平衡;
3)上樣、洗雜:將樣品上到平衡好的柱子上后,繼續(xù)用平衡 Buffer 進行雜質的清洗和去除。
4)洗脫:最后用洗脫 Buffer 將目的樣品洗脫。

 

圖 3. 重力過柱,純化抗體
 

■ 離心法,適合通過 IP 捕獲蛋白或研究蛋白-蛋白間相互作用。精細化操作,穩(wěn)!

將 Anti-Flag 親和凝膠吸入離心管,使用離心法操作。離心的方式同樣經平衡 → 上樣 → 洗雜 → 洗脫四個步驟,前三個步驟 Buffer 的置換通過離心棄掉上清來實現(xiàn),最后洗脫時離心收集上清。

 

圖 4. Anti-Flag Affinity Gel 的使用步驟

 
 
第三關 目的蛋白結合、洗脫
 
 
Input 明明有目的蛋白,目的蛋白明明已結合,但洗脫液中卻沒有目的條帶。
巧設對照,巧留樣,蛋白洗脫,我在行。
 
巧婦難為無米之炊,想讓我“無中生有”?No Way!
檢測結果無條帶,也許是以下原因。
 

 

PS:設置 Input 對照,確定目的蛋白已表達;保留上樣后的流出液/離心后上清液,確定樣本已結合。每步操作“留一手”,全面復盤 (分析實驗失敗原因) 有幫助。

 
 “變性”?“非變性”?下游實驗應用來決定
1)變性洗脫法      此方法洗脫的蛋白樣品后續(xù)可直接做 SDS-PAGE 檢測,簡便、高效。
2)非變性洗脫法   此方法洗脫的蛋白樣品保持原有的生物活性,可用于后期功能分析。常用的有酸性洗脫法,低 pH 水平可以解離大多數(shù)抗體-抗原相互作用。
 
洗脫后雜帶多、純度低
面對這個棘手的問題,我們首先需要分析雜蛋白的來源:是來自于目的蛋白的降解產物?與填料的吸附?還是與目的蛋白的互作?
 
1)蛋白部分降解:使用恰當?shù)?/SPAN>蛋白酶抑制劑;如對于低 pH 環(huán)境很敏感,需在洗脫前的接收管中提前加入中和液。
2)蛋白非特異性結合在抗體、凝膠或離心管壁上,建議對裂解液進行預處理,去除非特異性蛋白;在最后一次洗滌前,將樣品轉移到新的離心管中操作;洗滌效果不佳,建議增加洗滌時間及次數(shù),增加洗滌 Buffer 中 NaCl 或去垢劑的濃度等。

 
第四關 WB
 
 

這里來抄個作業(yè),3、2、1,上鏈接我就不信這個邪!打破 Western Blot 玄學操作。

 
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MCE 的所有產品僅用作科學研究或藥證申報,我們不為任何個人用途提供產品和服務。

 

發(fā)布者:上海皓元生物醫(yī)藥科技有限公司
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E-mail:sales@medchemexpress.cn

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