免疫熒光(IF)實驗樣本要求與實驗操作步驟介紹
瀏覽次數(shù):869 發(fā)布日期:2024-1-30
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免疫熒光(immunofluorescence,IF),通常是指用熒光標記的抗體示蹤或檢查樣品中相應(yīng)抗原的方法。根據(jù)抗原抗體反應(yīng),將不影響抗原抗體相互作用的熒光分子標記在抗體上,與其相應(yīng)的抗原反應(yīng)后,在熒光顯微鏡下針對熒光標記分子的激發(fā)光發(fā)射光進行觀察,從而檢測目的指標的相對含量、在組織細胞中的定位。
樣本準備要求:
1、取材手法:要求取材器械鋒利,盡可能選擇薄的手術(shù)刀片,減少剪刀的使用,避免擠壓挫傷標本。較準確地取到目的部位組織,夾取標本的時候盡量遠離目的區(qū)域組織。
2、取材速度:盡量保證樣本離體后5min內(nèi)放入到合適的固定液內(nèi)。如果一只動物同時取多種器官,優(yōu)先取消化器官,其次取中樞神經(jīng)系統(tǒng)器官(腦,脊髓等),皮膚、肌肉等可放到最后取。
3、組織塊大。何唇(jīng)灌注的標本組織厚度不要超過1cm。
4、固定液:針對不同的標本特點及實驗?zāi)康囊欢ㄒx用正確的固定液。
5、固定液量:固定液體積為組織的10倍,且組織能在容器內(nèi)自由移動,不貼壁不沉底,并做好清晰標記。
6、固定溫度:常溫即可,無需冷藏,切勿冷凍結(jié)冰,否則固定液結(jié)冰形成冰晶嚴重破壞組織形態(tài)結(jié)構(gòu)。
實驗流程圖
操作步驟:
1、細胞準備:對單層生長細胞,在傳代培養(yǎng)時,將細胞接種到預(yù)先放置有處理過的蓋玻片的培養(yǎng)皿中,待細胞接近長成單層后取出蓋玻片,PBS洗兩次;對懸浮生長細胞,取對數(shù)生長細胞,用PBS離心洗滌(1000rpm,5min)2次,用細胞離心甩片機制備細胞片或直接制備細胞涂片。
2、固定:根據(jù)需要選擇適當?shù)墓潭▌┕潭毎。固定完畢后的細胞可置于含疊氮納的PBS中4℃保存3個月。PBS洗滌3×5 min.
3、通透:使用交聯(lián)劑(如多聚甲醛)固定后的細胞,一般需要在加入抗體孵育前,對細胞進行通透處理,以保證抗體能夠到達抗原部位。選擇通透劑應(yīng)充分考慮抗原蛋白的性質(zhì)。通透的時間一般在5-15min.通透后用PBS洗滌3×5 min.
4、封閉:使用封閉液對細胞進行封閉,時間一般為30min.
5、一抗結(jié)合:室溫孵育1h或者4℃過夜。PBST漂洗3次,每次沖洗5min.
6、二抗結(jié)合:間接免疫熒光需要使用二抗。室溫避光孵育1h.PBST漂洗3次,每次沖洗5min后,再用蒸餾水漂洗一次。
7、封片及檢測:滴加封片劑一滴,封片,熒光顯微鏡檢查。