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內(nèi)皮細(xì)胞肌動(dòng)蛋白表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染方法比較研究

瀏覽次數(shù):156 發(fā)布日期:2025-3-8  來源:威尼德生物科技
摘要
對(duì)比脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染、電穿孔法及病毒載體法對(duì)原代人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞(HUVECs)的轉(zhuǎn)染效率、細(xì)胞存活率及肌動(dòng)蛋白表達(dá)水平的影響,優(yōu)化轉(zhuǎn)染策略。結(jié)果顯示,電穿孔法轉(zhuǎn)染效率最高(82.3%),但細(xì)胞存活率較低(65.1%);脂質(zhì)體法綜合表現(xiàn)最佳。研究為內(nèi)皮細(xì)胞基因功能研究提供了方法學(xué)參考。
引言
內(nèi)皮細(xì)胞在血管生成、炎癥反應(yīng)及屏障功能中發(fā)揮關(guān)鍵作用,其肌動(dòng)蛋白骨架的動(dòng)態(tài)調(diào)控是研究熱點(diǎn)之一。質(zhì)粒轉(zhuǎn)染技術(shù)是探究基因功能的核心手段,但內(nèi)皮細(xì)胞因分化程度高、增殖緩慢,轉(zhuǎn)染效率普遍偏低。目前常用方法包括脂質(zhì)體介導(dǎo)、電穿孔及病毒載體法,但不同方法對(duì)細(xì)胞活性及目標(biāo)蛋白表達(dá)的影響尚未系統(tǒng)評(píng)估。
原代HUVECs為模型,構(gòu)建攜帶綠色熒光蛋白(GFP)標(biāo)簽的β-actin表達(dá)質(zhì)粒,通過對(duì)比三種轉(zhuǎn)染方法的效率及細(xì)胞適應(yīng)性,結(jié)合蛋白表達(dá)定量分析,為內(nèi)皮細(xì)胞基因操作提供優(yōu)選方案。
材料與方法
1. 實(shí)驗(yàn)材料
細(xì)胞來源:原代人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞(HUVECs),傳代3-5代用于實(shí)驗(yàn)。
質(zhì)粒構(gòu)建:pEGFP-C1載體插入β-actin編碼序列,經(jīng)威尼德分子雜交儀驗(yàn)證插入正確性。
主要試劑:某試劑脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑、某試劑病毒包裝系統(tǒng)、某試劑細(xì)胞培養(yǎng)基。
儀器設(shè)備:威尼德電穿孔儀(參數(shù)范圍:100-300 V,脈沖時(shí)長1-10 ms)、威尼德紫外交聯(lián)儀(能量密度0.5 J/cm²)、熒光倒置顯微鏡、流式細(xì)胞儀。
2. 實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)
分組設(shè)置
脂質(zhì)體組:質(zhì)粒:試劑=1:3(μg:μL),孵育時(shí)間4 h;
電穿孔組:電壓200 V,脈沖時(shí)長5 ms;
病毒載體組:MOI=50,感染時(shí)間48 h。
檢測(cè)指標(biāo):轉(zhuǎn)染效率(GFP陽性率)、細(xì)胞存活率(CCK-8法)、β-actin表達(dá)量(Western blot)。
3. 實(shí)驗(yàn)步驟
3.1 細(xì)胞培養(yǎng)與質(zhì)粒轉(zhuǎn)染
HUVECs接種于6孔板(密度1×10⁵/孔),達(dá)80%匯合時(shí)進(jìn)行轉(zhuǎn)染。
脂質(zhì)體法:質(zhì)粒與某試劑按比例混合,室溫靜置20 min后加入細(xì)胞,4 h后更換完全培養(yǎng)基。
電穿孔法:細(xì)胞懸液與質(zhì);旌虾筠D(zhuǎn)移至威尼德電穿孔儀專用電擊杯,參數(shù)設(shè)置為200 V/5 ms。
病毒法:預(yù)感染前24 h更換含某試劑Polybrene(6 μg/mL)的培養(yǎng)基,加入病毒液后離心(1000×g,30 min)。
3.2 檢測(cè)與分析
轉(zhuǎn)染效率:轉(zhuǎn)染后48 h,流式細(xì)胞儀檢測(cè)GFP陽性細(xì)胞比例。
細(xì)胞活性:CCK-8試劑孵育2 h,酶標(biāo)儀測(cè)定450 nm吸光度。
蛋白表達(dá):裂解細(xì)胞后,威尼德紫外交聯(lián)儀交聯(lián)蛋白樣品,Western blot檢測(cè)β-actin條帶灰度值。
結(jié)果
1. 轉(zhuǎn)染效率對(duì)比
電穿孔組GFP陽性率最高(82.3±3.1%),顯著高于脂質(zhì)體組(68.5±2.7%)和病毒組(75.2±4.0%)(P<0.05)。
2. 細(xì)胞存活率差異
電穿孔法導(dǎo)致細(xì)胞存活率顯著下降(65.1±5.3%),脂質(zhì)體組(89.2±3.8%)與病毒組(83.6±4.1%)存活率較高。
3. β-actin表達(dá)水平
病毒載體組β-actin表達(dá)量最高(較對(duì)照組提升3.2倍),電穿孔組次之(2.8倍),脂質(zhì)體組最低(2.1倍)。
討論
1. 方法學(xué)優(yōu)勢(shì)與局限
電穿孔法雖效率突出,但高電壓易損傷細(xì)胞膜完整性,導(dǎo)致活性下降,適用于對(duì)細(xì)胞數(shù)量要求不高的瞬時(shí)表達(dá)實(shí)驗(yàn);脂質(zhì)體法操作簡(jiǎn)便且兼容性佳,適合長期基因表達(dá)研究;病毒法依賴感染效率,需嚴(yán)格生物安全管控。
2. 肌動(dòng)蛋白表達(dá)調(diào)控意義
β-actin過表達(dá)可能改變細(xì)胞遷移與屏障功能,本研究通過優(yōu)化轉(zhuǎn)染條件,為后續(xù)功能實(shí)驗(yàn)奠定基礎(chǔ)。
結(jié)論
電穿孔法適用于高轉(zhuǎn)染效率需求的短期實(shí)驗(yàn),脂質(zhì)體法在平衡效率與細(xì)胞活性方面更具優(yōu)勢(shì)。研究結(jié)果為內(nèi)皮細(xì)胞基因操作提供了適配不同實(shí)驗(yàn)場(chǎng)景的方法選擇依據(jù)。
參考文獻(xiàn)
1. Endothelial-leukocyte adhesion molecule 1 stimulates the adhesive activity of leukocyte integrin CR3 (CD11b\/CD18, Mac-1, alpha m beta 2) on human neutrophils[J].Lo S. K.,Journal of Experimental Medicine.1991,第35期
2. 分子克隆實(shí)驗(yàn)指南[M].(美) J. 薩姆布魯克; D. W. 拉塞爾著 黃培堂等譯.2002,第13期
3. 實(shí)用分子生物學(xué)方法手冊(cè)[M].李永明;趙玉琪.1999,第2期
4. 現(xiàn)代分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)技術(shù)[M].盧圣棟主編.1993,第6期
來源:威尼德生物科技(北京)有限公司
聯(lián)系電話:0311-85893323
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