模型類型 |
誘導方式 |
病理特征 |
適用研究場景 |
Ⅰ型模型 |
大劑量STZ |
β細胞完全破壞 |
急性代謝紊亂研究或免疫介導的β細胞損傷研究 |
Ⅱ型模型 |
高糖/高脂飲食+低劑量STZ |
外周組織胰島素抵抗+β細胞部分損傷 |
模擬人類2型糖尿病從代償性高胰島素血癥到失代償性高血糖的動態(tài)進程 |
02 實驗材料與方法
1 實驗動物
1) 物種:雄性SD大鼠(6-8周齡)或C57BL/6小鼠(8-10周齡)。
2) 飼養(yǎng)條件:SPF級環(huán)境,12小時光暗循環(huán),自由飲水。
2 造模方法
1) 高脂飼料配方:60 kcal%脂肪(超高脂)和45 kcal%脂肪(高脂)等多種配方,以及10kcal%脂肪的對照飼料;通常6-8周可建立Ⅱ型糖尿病模型。
2) 飼喂方式:自由進食進水;飼喂前期使用普通飼料搭配高脂飼料進行飼喂,慢慢過渡到完全飼喂高脂飼料
小貼士:飼料需低溫保存,每2-3天更換一次,防止變質
3) 小鼠飼養(yǎng)環(huán)境:3只1籠飼養(yǎng);但多只合籠飼養(yǎng)容易打架,導致小鼠體重下降甚至死亡,必要時可對其進行單籠飼養(yǎng);使用木屑墊料防止小鼠吃玉米芯墊料。
3 STZ注射
1) STZ配制:冰上溶解STZ于預冷檸檬酸緩沖液(濃度:大鼠30-40 mg/kg,小鼠50-100 mg/kg);
2) STZ注射:注射前禁食6 h,可提高β細胞對STZ敏感性,增加造模易感性;
大鼠:單次腹腔注射30-40 mg/kg
小鼠:單次腹腔注射100 mg/kg,或低劑量多次(如40 mg/kg/天×5天)
對照組注射等體積檸檬酸緩沖液。
小貼士:STZ配制及注射過程中均需避光低溫操作,配制完成后30min內完成注射。
03 模型評估
體重
持續(xù)關注小鼠體重變化
高糖飲食造模期間體重呈上升趨勢
STZ注射后體重呈下降趨勢
攝食量
測量攝食量,評估小鼠高脂飼料食用量
血糖
使用血糖儀檢測
小鼠的血糖值范圍一般在80-120 mg/dl之間
血糖濃度超過120 mg/dl為高血糖
濃度低于80 mg/dl為低血糖
血生化
通過ELISA或生化分析儀檢測血清胰島素水平
行為學
糖尿病動物可能表現出進食行為和運動行為的改變,這些變化可通過觀察和特定的行為學實驗進行評估
例如,糖尿病小鼠常表現出飲水量增加、尿糖升高,導致墊料更換頻率增高
病理診斷
組織形態(tài)學觀察主要是通過顯微鏡觀察糖尿病動物模型中各組織的病理變化
如胰島形態(tài)、細胞排列或免疫組化研究,以評估模型的構建是否成功。
此外,還可觀察腎臟等組織,來評估由糖尿病引發(fā)的糖尿病腎病模型。
圖 1 免疫組化標記胰島素,蘇木精反染后的胰腺組織病理學觀察(B)[1]
圖 2 HE染色后的腎臟組織(腎臟腎小球和腎小管)病理學觀察 [2]
注:(a) Normal control rats. (b) STZ-induced diabetic rats. (c) Diabetic rats treated with metformin. (d) Diabeticrats treated with F. deltoidea
參考文獻:
【1】 Samsulrizal, N., Yong-Meng, G., Ahmad, H., Syimal’ain Azmi, N., Mohamad Zin, N. S. N., & Mahdi, E. (2020). Infrared spectral markers for the nephroprotective effects of Ficus deltoidea in streptozotocin-induced diabetic rats. bioRxiv, 2020. 4120. https://doi.org/10.1101/2020.12.23.424120.
【2】Murata M, Takahashi A, Saito I, Kawanishi S. Site-specific DNA methylation and apoptosis: induction by diabetogenic streptozotocin. Biochem Pharmacol 57: 881–887, 1999. doi:10.1016/s0006-2952(98)00370-0.