血液生病了?小鼠模型助力細胞基因治療,為血液病研究帶來新希望
如果說骨骼是人體的行動支撐,那么血液,則是人體的動力之源。
一旦血液發(fā)生問題,對于人體而言,可謂是牽一發(fā)而動全身。
血液類遺傳疾病通常比較復(fù)雜并且很難徹底治愈,會對身體造成巨大的傷害。例如地貧、鐮狀細胞貧血、血友病等等,患者往往自幼發(fā)病,無法大膽地運動,且需要終身治療,為患者家庭和社會帶來了很重的經(jīng)濟負(fù)擔(dān)。
而
細胞基因治療,則為這類遺傳疾病的徹底治愈帶來了新的希望。從最初的基礎(chǔ)研究闡明疾病的發(fā)病機制,到發(fā)現(xiàn)基因編輯新方法的可行性驗證,再到細胞基因治療的有效性評估等等方面,
這些都離不開前期在小鼠模型中開展的臨床前的體內(nèi)實驗結(jié)果。
今天,J博士就來給大家嘮嘮小鼠模型在血液疾病中的研究策略。
β地貧和SCD的基因治療策略:
β地貧和SCD患者都是由于遺傳到有缺陷的基因,導(dǎo)致β珠蛋白的功能缺陷,呈現(xiàn)不同嚴(yán)重程度的疾病表型。
因此基因治療策略往往有:
1)導(dǎo)入正;蛱娲毕莼;
2)直接編輯糾正致病基因;
3)導(dǎo)入具有治療性的基因。
Addition——Bluebird bio:
LentiGlobin (Zynteglo) Beti-cel; BB305
2022年8月17日,全球首個治療輸血依賴型β地貧的細胞基因療法beti-cel獲FDA批準(zhǔn)上市,此前該療法已于2019年獲EMA批準(zhǔn)。
在自體造血干細胞中穩(wěn)定引入正常的β珠蛋白基因可以規(guī)避同種異體細胞移植的局限性和風(fēng)險,從而有效治療β珠蛋白缺陷相關(guān)的疾病。如藍鳥公司的beti-cel中采用的BB305載體,其構(gòu)建如下圖:
01 實驗設(shè)計與小鼠模型
02 藥效評估
在第一代移植后4個月,實驗表明自體移植的細胞可長期存活,且βA-T87Q-珠蛋白可持續(xù)生成,此外小鼠紅細胞參數(shù)分析顯示貧血表型得到改善,具有治療效果。血液生化學(xué)數(shù)據(jù)也表明未出現(xiàn)與βA-T87Q-轉(zhuǎn)基因蛋白生成相關(guān)的毒性。


03 安全性評估
為了深入了解插入誘變對惡性腫瘤(白血。┥傻臐撛谟绊,以評估長期安全性,
該研究中進行了涉及108個B6 CD45.1小鼠(Pep boy #002014)的二次移植。除了常規(guī)分析了移植中的載體拷貝數(shù)以及插入位點情況外,還用CD45.1和CD45.2的抗體,確定增殖性病變的起源是繼發(fā)性還是非繼發(fā)性受體起源。
此外因為該實驗中需要用輻照清髓來降低排斥反應(yīng),所以部分腫瘤的發(fā)生有可能與輻照還有小鼠的遺傳背景有關(guān),因此,該藥物也在免疫缺陷鼠NOD/SCID (#001303)中做了安全性測試,
結(jié)果表明沒有與BB305相關(guān)的毒性或致瘤性[1]。
Correction——
BEAM Therapeutics: BEAM-102
堿基編輯也是目前基因療法中的熱門。其可以在不導(dǎo)致DNA雙鏈斷裂的情況下,實現(xiàn)基因組中的單個堿基精確修改,如腺嘌呤堿基編輯器(ABE),能夠?qū)轉(zhuǎn)換為G。
像BEAM Therapeutics的BEAM-102就采用了該策略來治療SCD。在SCD中,該ABE方法雖然不能還原突變,但是
產(chǎn)生的珠蛋白變體不具有致病性,原理如下圖:
01 實驗設(shè)計與小鼠模型
該療法雖然目前因公司管線調(diào)整,暫停IND申請,
但前期的臨床前實驗數(shù)據(jù)如下:
研究團隊以SCD的Townes(#013071)模型開展實驗,通過電穿孔的方式將修復(fù)基因?qū)際SPC,隨后進行移植。
02 藥效評估
結(jié)果表明,初次和二次移植后,這些編輯后的造血干細胞能夠長期存在,并將鐮狀細胞病小鼠模型的血液學(xué)參數(shù)恢復(fù)到接近正常水平,SCD病理特征減輕[2]。
Inhibition——
CRISPR Therapeutics/Vertex: exa-cel; CTX001
除了可以添加β鏈外,科學(xué)家發(fā)現(xiàn)雖然大多數(shù)情況下,胎兒血紅蛋白HbF在出生后迅速降低,但是在一些人群觀察到了HbF的持續(xù)高表達,稱為HPFH。如果這些人同時也攜帶地貧或SCD突變的話,病況會出現(xiàn)不同程度的減輕。
2號染色體上的BCL11A是γ鏈的有效抑制因子,通過抑制BCL11A將有效提高成人中HbF的含量彌補成人血紅蛋白的缺失,延長疾病小鼠的壽命。像CRISPR Therapeutics/Vertex公司的CTX001,將有望成為第一個上市的CRISPR基因編輯療法。
01 實驗設(shè)計與小鼠模型
早期的臨床前實驗中,使用的小鼠模型如下:
Bcl11a全身敲除小鼠是致死的,早期研究中通過Bcl11a
fl/fl和EpoR-Cre
+(#035702)兩種品系雜交,后再與Townes模型(#013071)雜交,達到在SCD小鼠敲除紅系細胞的Bcl11a的目的
[3]。
02 藥效評估
與對照相比,在紅細胞Bcl11a敲除小鼠中,γ鏈含量顯著增加,血涂片中沒有可見的鐮狀細胞,紅細胞參數(shù)以及器官組織病理特征得到顯著改善。
更多內(nèi)容
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參考文獻:
[1] Curr Gene Ther. 2015. PMID: 25429463
[2] Nature. 2021.PMID: 34079130
[3] Science. 2011. PMID: 21998251