眾所周知,CRISPR/Cas9被業(yè)內(nèi)譽(yù)為“基因剪刀”,它可以高效地實(shí)現(xiàn)靶基因的編輯,自問(wèn)世以來(lái)就備受關(guān)注和青睞。CRISPR/Cas9系統(tǒng)是由CRISPR相關(guān)基因和Cas9組成,Cas9核酸酶會(huì)在向?qū)NA(Guide RNA, gRNA)的指引下,在完整基因組上的特定位點(diǎn)完成切割反應(yīng),同時(shí)Cas9的切割也依賴于gRNA和基因組特定位點(diǎn)配對(duì)區(qū)5′端的PAM結(jié)構(gòu)。
在前幾期中我們已經(jīng)詳細(xì)介紹過(guò)利用CRISPR/Cas9系統(tǒng)構(gòu)建基因編輯大小鼠的基本流程。然而,在具體的實(shí)驗(yàn)過(guò)程中,首先大部分的我們都會(huì)遇到這樣一個(gè)問(wèn)題,該如何根據(jù)研究目的設(shè)計(jì)sgRNA,如何選擇活性較高的sgRNA等。
在2013年,哈佛大學(xué)David Liu課題組通過(guò)研究證明CRISPR/Cas9的特異性僅與gRNA配對(duì)的靠近PAM處7-12bp堿基相關(guān),這說(shuō)明CRISPR/Cas9系統(tǒng)仍存在一定的脫靶風(fēng)險(xiǎn)。因此如何降低CRISPR/Cas9的脫靶效應(yīng)也成為科研工作者始終關(guān)注的焦點(diǎn)問(wèn)題。由此,設(shè)計(jì)并篩選高效特異性的gRNA對(duì)于降低該系統(tǒng)的脫靶顯得至關(guān)重要。
今天,小編綜合科學(xué)家們已發(fā)表的研究結(jié)果及自己的實(shí)驗(yàn)經(jīng)驗(yàn),為大家詳細(xì)介紹一下如何設(shè)計(jì)和篩選高效的sgRNA。
1、gRNA潛在序列預(yù)測(cè)根據(jù)實(shí)驗(yàn)?zāi)康牟檎夷康幕蛐蛄,并確定需要編輯的具體區(qū)域。將該區(qū)域的堿基序列復(fù)制至sgRNA預(yù)測(cè)網(wǎng)站gRNA Designer,從而預(yù)測(cè)潛在sgRNA序列。接下來(lái)根據(jù)預(yù)測(cè)得分值來(lái)選擇sgRNA靶點(diǎn)(圖1)。
gRNA designer網(wǎng)址:http://portals.broadinstitute.org/gpp/public/analysis-tools/sgrna-design-v1
圖1. 利用gRNA Designer軟件進(jìn)行靶點(diǎn)預(yù)測(cè)
選擇了得分值較高的一個(gè)或數(shù)個(gè)sgRNA位點(diǎn)后,則需要進(jìn)一步優(yōu)化。首先比對(duì)初選的候選靶點(diǎn)的核心序列(靠近PAM處7-12bp堿基)在基因組中是否特異,如果在基因組上存在與候選靶點(diǎn)相似度高的序列,則應(yīng)放棄該候選靶點(diǎn)。
3、gRNA的活性篩選由于體內(nèi)的基因組具有復(fù)雜的結(jié)構(gòu),僅憑軟件預(yù)測(cè)和理論推導(dǎo)仍無(wú)法確定所選擇的gRNA是否有效,以及活性是否較高,因此我們需要進(jìn)行g(shù)RNA活性篩選。
首先我們將所選gRNA對(duì)應(yīng)的基因組靶點(diǎn)上下游各400bp(共800bp)的片段克隆至pUCA(Luc)質(zhì)粒中,以造成熒光素酶(luciferase)蛋白翻譯提前終止,從而表達(dá)無(wú)功能的熒光素酶。
同時(shí)將gRNA構(gòu)建至px459質(zhì)粒中,與pUCA共同轉(zhuǎn)染293T細(xì)胞,Cas9蛋白能對(duì)靶位點(diǎn)的切割形成完整的熒光素酶編碼序列,從而表達(dá)有功能的熒光素酶。因?yàn)闊晒馑孛傅幕钚耘cCRISPR/Cas9 的活性成正相關(guān),所以可利用Luciferase report試劑盒,通過(guò)檢測(cè)熒光素酶表達(dá)量來(lái)指示gRNA的活性(圖2)。
圖2. gRNA活性檢測(cè)流程圖
篩選出了活性高的gRNA后,似乎下一步加上Cas9蛋白酶就構(gòu)成了CRISPR/Cas9系統(tǒng)了,可以用來(lái)構(gòu)建基因編輯動(dòng)物了。但其實(shí)還遠(yuǎn)遠(yuǎn)不夠,其中還有很多十分重要的環(huán)節(jié),你也必須掌握,且聽(tīng)下次分解。
參考文獻(xiàn):
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