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ChIP-seq等技術(shù)揭示突變?cè)诎┌Y中的H3K36甲基化新型表觀遺傳治療靶點(diǎn)

瀏覽次數(shù):113 發(fā)布日期:2025-4-10  來(lái)源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)
SETD2(SET domain containing 2)是哺乳動(dòng)物中唯一負(fù)責(zé)催化H3K36me3(histone 3,
lysine 36,tri-methylation)蛋白的表觀遺傳因子。H3K36me3在RNA剪接、DNA修復(fù)和轉(zhuǎn)錄起始調(diào)控等多種細(xì)胞過(guò)程中發(fā)揮重要作用,SETD2突變與多種癌癥的發(fā)生發(fā)展密切相關(guān),尤其是在透明細(xì)胞腎細(xì)胞癌(clear cell renal cell carcinoma, ccRCC)中,SETD2突變與不良預(yù)后相關(guān)。然而,SETD2功能喪失型突變的靶向治療一直是一個(gè)挑戰(zhàn)。
 
近日,美國(guó)梅奧診所分子藥理學(xué)和實(shí)驗(yàn)治療學(xué)系Keith D. Robertson團(tuán)隊(duì)聯(lián)合美國(guó)南卡醫(yī)科大學(xué) (MUSC) Hollings癌癥中心Thai H. Ho,合作探索了SETD2功能喪失型突變?cè)诎┌Y中的作用機(jī)制,并尋找靶向這種突變的新型表觀遺傳靶向治療方法。研究通過(guò)一系列的實(shí)驗(yàn),包括基因組范圍內(nèi)的合成致死(synthetic lethal, SL)篩選、基因編輯、表觀遺傳分析(ChIP-seq)和藥物驗(yàn)證等,揭示了SETD2缺失細(xì)胞對(duì)NSD1(nuclear receptor-binding SET domain protein 1)介導(dǎo)的H3K36甲基化具有特有敏感性,并提出了基于表觀遺傳修飾的個(gè)性化治療策略。相關(guān)研究成果以《SETD2 loss-of-function uniquely sensitizes cells to epigenetic targeting of NSD1-directed H3K36 methylation》為題發(fā)表于《Genome Biology》期刊。

標(biāo)題:SETD2 loss-of-function uniquely sensitizes cells to epigenetic targeting of NSD1-directed H3K36 methylation(SETD2功能喪失型突變使細(xì)胞對(duì)NSD1介導(dǎo)的H3K36甲基化的表觀遺傳靶向治療具有獨(dú)特敏感性)
期刊:Genome Biology
影響因子:IF10.1/Q1
技術(shù)平臺(tái):ChIP-seq、RNA-seq等
 
本研究首先采用了一種無(wú)偏倚的全基因組范圍的合成致死篩選方法,鑒定出另一個(gè)H3K36me 的writer因子NSD1是SETD2突變細(xì)胞中的合成致死(SL)修飾因子,并在小鼠和人類(lèi)的同源透明細(xì)胞腎細(xì)胞癌和永生化腎上皮細(xì)胞系中驗(yàn)證了這種合成致死相互作用。通過(guò)CRISPRi靶向方法耗盡NSD1,會(huì)促進(jìn)SETD2突變細(xì)胞丟失,同時(shí)伴隨DNA損傷和凋亡水平升高。但只有抑制NSD1(非其他相關(guān)H3K36甲基轉(zhuǎn)移酶)才會(huì)在這些模型中促進(jìn)合成致死性。分別對(duì)NSD1和NSD2的基因組H3K36me2靶向進(jìn)行作圖,揭示了這些表觀遺傳writer因子的特異性功能。此外研究還通過(guò)使用BT5(一種靶向NSD1的首創(chuàng)藥物抑制劑)重現(xiàn)這種合成致死表型進(jìn)行概念驗(yàn)證,表明了靶向這種合成致死相互作用的治療可行性。
本研究將全基因組篩選方法與最新的遺傳和藥理學(xué)建模方法相結(jié)合,揭示了一種全新的表觀遺傳方法,用于靶向癌癥中具有挑戰(zhàn)性的SETD2功能喪失突變進(jìn)行個(gè)性化治療。
 
研究方法
合成致死篩選:研究者利用CRISPR/Cas9技術(shù)在SETD2野生型和突變型的HAP1細(xì)胞系中進(jìn)行基因組范圍的篩選,尋找與SETD2缺失具有合成致死關(guān)系的基因。
基因編輯和細(xì)胞模型構(gòu)建:通過(guò)CRISPR/Cas9技術(shù),研究者在多種細(xì)胞系中構(gòu)建了SETD2野生型和突變型的同源細(xì)胞模型,包括ccRCC細(xì)胞系786-O和A498,以及小鼠胚胎成纖維細(xì)胞(MEF)。
表觀遺傳分析:研究者利用ChIP-seq(染色質(zhì)免疫沉淀測(cè)序)技術(shù)分析了H3K36me2和H3K36me3在基因組上的分布情況,以了解SETD2缺失對(duì)組蛋白修飾的影響。
藥物驗(yàn)證:研究者使用BT5(一種針對(duì)NSD1的小分子抑制劑)驗(yàn)證了通過(guò)藥物抑制NSD1是否能夠模擬基因敲除NSD1的合成致死效應(yīng)。
 
結(jié)果圖形
(1)CRISPR/Cas9篩選揭示NSD1是SETD2突變?nèi)撕托∈蠹?xì)胞中的合成致死(SL)修飾因子
通過(guò)CRISPR/Cas9篩選,研究者發(fā)現(xiàn)NSD1是SETD2缺失細(xì)胞的合成致死修飾因子。在SETD2突變的細(xì)胞中,NSD1缺失會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞活力顯著下降,伴隨DNA損傷和凋亡水平升高。

圖1:全基因組篩選鑒定NSD1為SETD2缺失細(xì)胞中的潛在SL修飾因子。
A. 對(duì)同源SETD2野生型/突變型HAP1細(xì)胞中整體H3K36甲基化狀態(tài)的Western blot分析。
B. CRISPR/Cas9合成致死篩選的示意圖。
C. 火山圖突出顯示NSD1為合成致死靶點(diǎn)。
D. 對(duì)篩選出的127個(gè)SL候選基因進(jìn)行GO分析,發(fā)現(xiàn)在參與表觀遺傳重塑和DNA損傷/修復(fù)因子中富集。
E. 基因視圖示意圖,展示通過(guò)Cre-lox切除第6外顯子實(shí)現(xiàn)MEFs中Setd2的誘導(dǎo)性缺失。
F. PCR基因分型確認(rèn)在Setd2flox/flox親本和Setd2flox/flox;Nsd1-/- MEF細(xì)胞系中他莫昔芬(tamoxifen)誘導(dǎo)的Cre活性。
G. Setd2flox/flox和Setd2flox/flox;Nsd1-/- MEF細(xì)胞系經(jīng)4-OHT處理后結(jié)晶紫染色。
 
(2)通過(guò)基因組編輯驗(yàn)證新型SETD2同源/缺失ccRCC模型
SETD2功能缺失突變?cè)诙喾N不同的癌癥類(lèi)型中很常見(jiàn),但在ccRCC中最常見(jiàn),其中SETD2缺失促進(jìn)腫瘤進(jìn)展和轉(zhuǎn)移。因此研究人員選擇ccRCC細(xì)胞系786O和A498作為模型,以進(jìn)一步探究NSD1在驅(qū)動(dòng)SETD2突變體SL中的作用。
圖2:同源SETD2突變的失活/激活功能模型在透明細(xì)胞腎細(xì)胞癌(ccRCC)中的應(yīng)用
A. 基因組示意圖突出顯示A498細(xì)胞系中SETD2的內(nèi)源性突變以及用于通過(guò)同源重組(HR)修復(fù)2個(gè)核苷酸缺失的基因組編輯策略。
B. 在HR和Cre介導(dǎo)的選擇載體(selection cassette)切除后,對(duì)“修復(fù)”的A498(SET-HDR)細(xì)胞系進(jìn)行PCR基因分型。
C. 通過(guò)Sanger測(cè)序色譜圖確認(rèn)A498 SET-HDR細(xì)胞系中“TG”缺失的修復(fù)。
D. 在4×放大倍數(shù)下,對(duì)A498親本和SET-HDR細(xì)胞系進(jìn)行明場(chǎng)形態(tài)學(xué)評(píng)估。
E. 對(duì)源自A498和786-O ccRCC細(xì)胞系的SETD2功能正常/缺失細(xì)胞系進(jìn)行整體H3K36甲基化狀態(tài)的Western blot分析。
F. 通過(guò)ChIP-seq揭示的A498 SET-HDR和FLAG-SETD2拯救系中H3K36me3增加的火山圖。
G. A498親本、SET-HDR和FLAG-SETD2系中H3K36me3峰的標(biāo)簽密度圖。
H. 對(duì)應(yīng)于A498和786O ccRCC細(xì)胞系的野生型、SETD2突變和拯救細(xì)胞系中H3K36me3 peaks的基因水平視圖。
 
(3)轉(zhuǎn)錄組學(xué)/表觀基因組分析揭示H3K36me2在SETD2突變細(xì)胞中的潛在補(bǔ)償作用
表觀基因組(ChIP-seq)和轉(zhuǎn)錄組(RNA-seq)揭示SETD2缺失導(dǎo)致H3K36me3整體性丟失,而H3K36me2在基因組上的分布發(fā)生了顯著變化,特別是在SETD2缺失的細(xì)胞中,H3K36me2增加可能作為一種補(bǔ)償機(jī)制來(lái)維持基因組的穩(wěn)定性。

圖3:SETD2/H3K36me3丟失導(dǎo)致的表觀遺傳重組增加了H3K36me2標(biāo)記的普遍性
A-C. MA圖展示A498、786O和RPTEC同源模型中SETD2突變的差異基因表達(dá)。
D. A498、786O、RPTEC同源模型中SETD2突變及一組TCGA-KIRC的SETD2野生型/突變樣本的差異基因表達(dá)GSEA通路熱圖。
E. ccRCC模型中與干擾素信號(hào)和PD-1信號(hào)相關(guān)的SETD2依賴(lài)性調(diào)控的重疊GSEA富集圖。
F.在FLAG-SETD2拯救后,786-O突變細(xì)胞與野生型細(xì)胞(x軸)中差異表達(dá)基因逆轉(zhuǎn)(y軸)相關(guān)性圖。紅點(diǎn)表示在A498同源模型中觀察到的共有差異表達(dá)。
G. SETD2突變同源模型H3K36me3丟失peaks(黑色)和H3K36me2增加peaks(金色)火山圖。
H. A498和786O同源ccRCC中基因水平的H3K36me3(黑色)和H3K36me2(金色)peaks視圖。
 
(4) ccRCC細(xì)胞系通過(guò)CRISPRi抑制NSD1(而非NSD2或NSD3)能夠重現(xiàn)SETD2突變的SL表型
圖4:使用dCas9-KRAB急性耗竭NSD家族成員證實(shí)了與NSD1缺失相關(guān)的SL表型
A. 在表達(dá)dCas9-KRAB的SETD2野生型/突變型786-O細(xì)胞系中,通過(guò)qRT-PCR分析詳細(xì)說(shuō)明各個(gè)NSD因子的特異性耗竭情況。
B. 在786-O野生型細(xì)胞中,通過(guò)CRISPRi耗竭各個(gè)NSD因子后,對(duì)整體H3K36甲基化狀態(tài)進(jìn)行Western blot分析。
C. 評(píng)估在CRISPRi耗竭靶因子后細(xì)胞的相對(duì)適應(yīng)性的細(xì)胞競(jìng)爭(zhēng)/譜系追蹤實(shí)驗(yàn)示意圖。
D. 在786-O野生型和突變型CRISPRi細(xì)胞系中,NSD1耗竭(左)、NSD2耗竭(中)和NSD3耗竭(右)細(xì)胞的相對(duì)貢獻(xiàn)。
E. 在CRISPRi耗竭NSD1、NSD2和NSD3后,786-O和A498同源細(xì)胞系的集落形成實(shí)驗(yàn)。
F. 集落形成實(shí)驗(yàn)的定量分析。
 
(5)DNA損傷和凋亡是SETD2突變型SL表型的基礎(chǔ)
為了闡明SL表型背后的細(xì)胞效應(yīng),研究人員在ccRCC同基因模型中進(jìn)行RNA-seq以定義SL的基因特征。

圖5:轉(zhuǎn)錄組分析揭示了與DNA損傷和凋亡相關(guān)的SL基因特征
A. 揭示A498和786-O同源模型中SL基因特征的轉(zhuǎn)錄組方法示意圖。
B. A498親本和SET-HDR細(xì)胞系的RNA-seq的主成分分析(PCA)圖,這些細(xì)胞系經(jīng)過(guò)sgCTRL、sgNSD1和sgNSD2轉(zhuǎn)導(dǎo)和選擇。
C. A498親本/sgNSD1樣本與A498親本/sgCTRL + A498 SET-HDR/sgNSD1(SETD2/NSD1雙敲除與剩余)之間的差異基因表達(dá)MA圖以揭示與模型相關(guān)的SL基因。
D. A498和786-O SL基因集的GSEA通路熱圖。
E. A498和786-O SL樣本中與凋亡和細(xì)胞防御相關(guān)信號(hào)的增強(qiáng)GSEA富集圖。
F. A498和786-O SL基因集中共同上調(diào)和下調(diào)的基因維恩圖。
G. 特異性耗竭NSD1、NSD2和NSD3的A498和786-O同源系中,相對(duì)caspase 3/7活性。
H. 在CRISPRi耗竭NSD1后,786-O突變細(xì)胞中caspase 3/7活性的升高FACs圖。
I. 在CRISPRi耗竭NSD1或NSD2后,786-O野生型和突變細(xì)胞中DNA雙鏈斷裂標(biāo)記物γ-H2AX以及caspase 3/7活性FACs染色分析。
 
(6)差異性H3K36me2靶向突出NSD1和NSD2的不同活性
研究發(fā)現(xiàn),盡管NSD1和NSD2都能催化H3K36me2,但它們?cè)诨蚪M上的作用位點(diǎn)和功能存在顯著差異。NSD1主要靶向增強(qiáng)子區(qū)域,而NSD2主要靶向基因體區(qū)域。
圖6:NSD1和NSD2的分子活性差異揭示其在指導(dǎo)SETD2突變SL中的不同活性
A. 786-O野生型細(xì)胞通過(guò)CRISPRi耗竭NSD1或NSD2后H3K36me2標(biāo)記的差異性ChIP-seq結(jié)果火山圖。NSD1特異性peaks(紫色);NSD2特異性peaks(金色);共有peaks(黑色)。
B. 在786-O野生型細(xì)胞中,對(duì)NSD1特異性和NSD2特異性H3K36me2 peaks進(jìn)行ChromHMM建模,對(duì)比H3K36me3、H3K36me2、H3K27ac、H3K27me2、H3K27me3和H3K4me1。
C. DeepTools分析NSD1特異性和NSD2特異性H3K36me2 peaks及其對(duì)H3K36me3相互調(diào)控。
D. NSD1特異性和NSD2特異性H3K36me2與H3K4me1和H3K36me3的重疊情況標(biāo)簽密度圖。
E. A498親本細(xì)胞中sgNSD1與sgNSD2的差異基因表達(dá)MA圖。
F. A498親本細(xì)胞CRISPRi耗竭NSD1或NSD2后,與SL基因CD82和IL6對(duì)應(yīng)的基因位點(diǎn)上H3K36me2 peaks(金色)的基因水平視圖。陰影區(qū)域表示NSD1特異性H3K36me2丟失。
 
(7)SETD2突變的ccRCC細(xì)胞系對(duì)NSD1的藥理抑制敏感
使用BT5抑制NSD1能夠模擬NSD1基因敲除效應(yīng),SETD2突變細(xì)胞對(duì)BT5表現(xiàn)出更高的敏感性,這為開(kāi)發(fā)靶向SETD2突變癌癥的表觀遺傳治療提供了有力的證據(jù)。

圖7:使用BT5抑制NSD1重現(xiàn)SETD2突變SL的遺傳模型
A. 為評(píng)估在特定抑制劑處理下,共培養(yǎng)中SETD2野生型/突變型細(xì)胞的相對(duì)適應(yīng)性,使用活細(xì)胞顯微鏡進(jìn)行細(xì)胞競(jìng)爭(zhēng)/譜系追蹤實(shí)驗(yàn)。
B. 在SETD2功能正常細(xì)胞的共培養(yǎng)中,經(jīng)不同濃度BT5處理后,SETD2突變型786-O(左)和A498(右)的相對(duì)貢獻(xiàn)。
C. 786-O和A498同源細(xì)胞系在不同濃度BT5處理下的藥代動(dòng)力學(xué)分析。
D. 經(jīng)不同濃度BT5處理3天后,整體H3K36甲基化水平的Western blot分析。
E. 經(jīng)5μM BT5(藥理學(xué))處理或通過(guò)CRISPRi耗竭NSD1(遺傳學(xué))處理的786-O SETD2突變細(xì)胞中差異表達(dá)基因的重疊情況維恩圖。
F. 比較BT5藥理學(xué)抑制和CRISPRi抑制之間共有差異表達(dá)基因相關(guān)性圖。
G. 在SETD2突變和H3K36me3(藍(lán)色)丟失下,NSD1介導(dǎo)的H3K36me2(黃色)在維持基因組保真度中的補(bǔ)償作用模型圖。

易小結(jié)
本研究揭示了SETD2缺失細(xì)胞對(duì)NSD1介導(dǎo)的H3K36甲基化的特有敏感性,并提出了通過(guò)靶向NSD1來(lái)治療SETD2突變癌癥的新策略。研究結(jié)果不僅增進(jìn)了對(duì)SETD2在癌癥中作用機(jī)制的理解,還為開(kāi)發(fā)新型表觀遺傳治療藥物提供了重要的理論依據(jù)。
ChIP-seq在本研究中的作用
  • 分析組蛋白修飾的變化:通過(guò)ChIP-seq,研究者精確地分析H3K36me2和H3K36me3在基因組上的分布變化,從而揭示SETD2缺失對(duì)組蛋白修飾的整體性影響。
  • 揭示NSD1和NSD2的功能差異:ChIP-seq結(jié)果顯示NSD1和NSD2在基因組上的靶向位點(diǎn)不同,這一發(fā)現(xiàn)對(duì)于理解它們?cè)赟ETD2缺失細(xì)胞中的不同作用機(jī)制至關(guān)重要。
  • 驗(yàn)證藥物作用機(jī)制:通過(guò)比較BT5處理前后的H3K36me2分布,研究者驗(yàn)證BT5是否通過(guò)抑制NSD1的活性來(lái)影響組蛋白修飾,從而進(jìn)一步確認(rèn)藥物的作用機(jī)制。

參考文獻(xiàn):
Wagner RT,et al. SETD2 loss-of-function uniquely sensitizes cells to epigenetic targeting of NSD1-directed H3K36 methylation. Genome Biol. 2025 Feb 5;26(1):22. pii: 10.1186/s13059-025-03483-z. doi: 10.1186/s13059-025-03483-z.
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標(biāo)簽: DNA甲基化
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